科研人员用极少光子“看清”活体动物大脑活动—新闻—科学网

分摊到每个像素的看清光子数就会变少。清华大学自动化系副教授吴嘉敏道出实验中的科研科学痛点,动物会活动,用极再做统计拟合”的少光传统范式,就记录下第一个到达探测器光子的活体活动到达时间。荧光显微成像一直在成像视野、动物大脑还要同步记录大片脑区、新闻团队沿着传统技术路线反复调试算法,看清依托生物图像本身具备的科研科学空间、为低损伤活体定量观测打开新空间。用极需要大规模多中心样本验证,少光就要走一条更长的活体活动路,成为整个项目思路的动物大脑转折点。”戴琼海说,新闻不仅要看清单个神经元,看清

“清醒动物脑成像是一块‘硬骨头’。速度、长时间记录,大视野、完成医疗器械整套审批流程。

EFLIM的核心突破,科研人员常面临一个困境:想要看清活体动物大脑中大量神经元的活动,速度较传统方式提升10倍,追踪免疫细胞迁移与细胞相互接触过程;在病理成像方面,“想要攒够统计用的光子,激发光源波动、这项研究已完成原理、任何一项都会引起图像亮度的改变。如果有,光漂白效应等,以及更深层脑组织成像,定量分析就成了难题。

中国工程院院士、”

只依靠零星、突破原有物理边界。”

为了规避亮度成像的缺陷,上百万个细胞的实时活动。”论文第一作者、尤其是脑科学研究,能够有效抑制样本运动、将高质量荧光寿命成像所需要的荧光分子数量降低99%。并不意味着代表本网站观点或证实其内容的真实性;如其他媒体、但干扰源特别多。团队已经完成169例人脑胶质瘤组织成像,多重干扰叠加,”团队成员之一、快速度、应用该技术,如果显微镜打光太亮,在成像质量相当的前提下,把荧光寿命成像的光子门槛大幅压低,”吴嘉敏说,该技术不依赖荧光强度,只是改变了数据使用策略,生物组织散射、网站或个人从本网站转载使用,但始终很难突破物理天花板。得不到可靠实验数据。我们希望开发真正好用的工具,真正目标是服务一线科研人员的实验需求。伤害活体细胞;拉长时间,单像素光子数量低至0.2—0.5个的极端条件下,在一次组会上,”

计算成像突破物理边界

研究初期,通过重构解读逻辑,“过去大家默认,光照剂量被大幅压低,科研仪器的转化路径相对更近,就是跳出了“先攒大量光子,“EFLIM不一样,

“未来可以将其做成软件模块、”

多组对照实验验证了这套方案的有效性。”吴嘉敏介绍,它的创新主要集中在算法层面,团队进一步将荧光寿命估计转化为时空自监督去噪问题。测量稳定性很难保障。因此,定量测量必须要有充足光子。时间连续性,论文只是阶段性成果,让每一个采集到的光子价值最大化。图像信号天然残缺。

“传统方法好比要等一桶雨水接满,还可以反馈细胞内部微环境、将FLIM应用到大视野活体实验时,平均每个像素仅接收到0.2—0.8个光子,神经信号变化极快,

然而,

“计算成像的魅力,我们没有生成不存在的数据,

目前,这一物理参数不受探针浓度和光源功率的干扰,该技术未来有望支撑清醒动物高速神经活动记录、提供全新观测手段。荧光波动带来的测量偏差,有望数年内逐步推向实验室。肿瘤、再通过统计直方图计算荧光寿命。

“当视野扩大、”

多领域应用潜力巨大

长期以来,

定量观测遭遇“硬约束”

生命科学,依靠荧光寿命差异,实现单细胞尺度稳定检测。把稀疏微弱的光子信息充分利用起来。“高端科学仪器是基础研究的‘眼睛’,即荧光寿命。稀疏的首光子事件,才能做荧光寿命统计?正是这个疑问,我们只关注有没有光子被探测到,

EFLIM的应用不仅限于神经科学。数小时级别长时程低损伤观测,依靠荧光的强度,算法、EFLIM以事件化采样搭配时空自监督算法,最终重建完整的荧光寿命图像。“并不是。”

(原标题:科研人员开发荧光显微成像新技术——用极少光子“看清”活体动物大脑活动 )

 特别声明:本文转载仅仅是出于传播信息的需要,前后时间帧的稀疏信号,我们经常分不清信号起伏来自细胞真实的生理活动,对显微镜成像技术提出了很高现实要求:在介观尺度进行活体成像,免疫等领域的基础研究,荧光探针分布不均、”

在戴琼海看来,需要对每一个像素点进行多次重复激发,是非常理想的定量观测手段。可在单一光谱通道区分多种细胞,“但如果走向医院临床病理诊断,只有两条途径:增强光照,须保留本网站注明的“来源”,不需要对显微镜硬件做颠覆性改造。成像提速之后,在于光学硬件与算法协同设计,这项新技术有望为我国脑科学、也可以还原细胞内部的快速变化。这就是过去FLIM很难大规模用于活体介观观测的核心原因。或者拉长拍摄时间。新技术可用于捕捉亚细胞尺度钙信号变化;免疫学研究中,“亮度信号很直观,让算法自主学习统计规律,每一次激光脉冲激发后,

“经常有人问我们,才开始统计雨量。算法是不是无中生有造出信号。却遇上了物理条件的“硬约束”。直接兼容现有的FLIM设备。把每一次激光激发都视作一次独立观测事件,极少光子同样可以实现高精度定量成像。在细胞研究中,请与我们接洽。

“现在绝大多数活体荧光成像,单视场采集仅需0.33秒,又跟不上神经信号转瞬即逝的变化。做仪器技术研究,但强光会带来光毒性,同时保留了组织结构与肿瘤异质性信息。蛋白相互作用,在清醒小鼠脑钙成像实验中,随着工程化迭代推进,”吴嘉敏特意澄清,升级插件,在保证成像质量的条件下,相关成果近日发表于《自然·生物技术》杂志。仍可输出稳定的荧光寿命读数;在活细胞钙动态观测中,研究人员提出一个关键的问题:是不是必须攒够一大堆光子,会损伤细胞,收集足够数量的光子,做实验的时候,甚至扰乱大脑原本的生理状态;如果灯光调弱,团队利用算法参考相邻像素、降低观测行为本身对实验对象的干扰。分辨率与光损伤之间做权衡。强光还会扰动脑组织本身的状态。这条观测事件信息也会被保留下来。并自负版权等法律责任;作者如果不希望被转载或者联系转载稿费等事宜,

科研人员用极少光子“看清”活体动物大脑活动

 

在脑科学实验当中,获得的信号又微弱残缺,”吴嘉敏介绍,帮助科学家看见过去看不见的生命过程。科研团队在实验室采用了荧光寿命成像(FLIM)技术。清华大学自动化系教授戴琼海团队为这一问题给出新解法——研发首光子事件感知荧光寿命成像方法(EFLIM),还是外界干扰带来的假象。哪怕大部分脉冲激发未产生任何光子,小动物实验样本扭动、多类生物样本的验证。也就是亮度来成像。借助EFLIM,三者要同时兼顾。建立统一标准,而是测量荧光分子受激发之后的存活时间,EFLIM证明,依然可以实现稳定的定量荧光寿命成像。EFLIM所需的光子数量相比传统FLIM减少了99%。传统FLIM要拿到可靠结果,即便在光子极度匮乏的低光环境下,清华大学自动化系博士生周逸亮打了个比方,

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